KCI 1
ZHAW_BSc_BMLD22_FS23_Klinische Chemie und Immunologie 1
ZHAW_BSc_BMLD22_FS23_Klinische Chemie und Immunologie 1
Komplikationen Diabetische Ketoazidose (Typ 1)
• Plasmaglukose > 13.9 mmol/L
• arterieller pH < 7,5
• Ketonkörper im Urin
Komplikationen
•Hyperosmolares hyperglykämisches Syndrom (Typ 2)
• Sehr hohe Glukosewerte, z.B. Plasmaglukose > 22.2 mmol/L
• Plasmaosmolalität ≥ 315 mOsmol/kg
• Patient eingetrüb
Folgen von Diabetes
Diagnostik
Behandlung
Medikament Metformin wirkt auf Leber, Skelettmuskel,Fettzellen, Darm
weitere..
Wissen was der pH Wert ist und wie er gemessen wird
Negativer, dekadischer Logarithmus der Hydronium-Aktivität (Konz.)
pH = -log(a H+) = -log(H+)
pH im Blut vom Mensch 7.35-7.45
pKs-Wert
gibt an wie stark oder schwach eine Säure in wässriger Lösung ist (je kleiner, desto stärker die Säure)
Puffer
Gemisch aus schwacher Säure und korrespondierenden Base
Konzept von Puffer: pH Sprung wird abgefedert
Das Prinzip und die Funktionsweise des Kohlendioxid/Hydrogencarbonat-Puffers kennen
Hauptpuffer in unserem Körper
Wissen wie eine Alkalose oder Azidose definiert ist und was sie ausmacht
Azidose: Störung Säure-Base Gleichgewicht (pH <7.35)
Ursachen:
-Anfall von Ketonsäuren (Diabetes Mellitus, Hunger)
- Laktatbildung (Laktatazidose, Hypoxie bei Shock, respiratorische Insuffizienz, Anämie)
-Salicylsäure (Salicylat-Intoxikation)
-Ameisensäure (Methanol-Intoxikation)
-Erhöhte Chloridaufnahme (NH4Cl-Gabe, Uretero-Enterostomie (Austausch von Cl- mit HCO- im Darm)
-Akutes Nierenversagen/chronische Niereninsuffizienz (Bicarbonat-Resorption eingeschränkt)
-Angeborene und erworbene (medikamentös bedingt) Funktionsstörung der prox. & dist. Tubuli der Niere
-Hyperkaliämie (Kalium strömt im Austausch gegen H+ in die Zellen)
Alkalose: Störung Säure-Base Gleichgewicht (pH >7.35)
Ursachen:
- Chloridverluste (Erbrechen oder Magendrainage, Diuretika)
- Diuretika
-Mineralkortikoide (gesteigerte renale H+ und Kaliumsekretion)
-Primärer und sekundärer Hyperaldosteronismus sowie Cushing-Syndrom (K+serum↓, Cl-Serum ↓)
-Zufuhr alkalischer Substanzen (Natron, Antazida, Citrat (Blutkonserven), Laktat oder Milchalkalisyndrom)
-Kaliummangel
-Nach akuter Korrektur einer Hyperkapnie (e.g. nach Intubation kompensatorisch erhöhtes Bicarbonat und rasch sinkendes CO2)
Wissen wie und aus was (Material) im Labor Blutgas gemessen wird
Material: Arterielles heparin Vollblut (Kapillarblut) - von Herz weg daher nicht venöses Blut
gemessen wird:
• Partialdruck von Sauerstoff (pO2 )
• Partialdruck von Kohlendioxid (pCO2 ),
• pH • HCO3 -
• Elektrolyten (Na+ und K+ )
• Lactat
• Hämoglobin
• Hämatokrit
Die Präanalytischen Anforderungen der Blutgasanalytik kennen
Arterielles Blut:
• Verwendung von Kunststoffspritzen mit innen aufgesprühtem Elektrolyt-balanciertem Heparin
• Die Spritze muss sofort nach der Entnahme entlüftet und verschlossen sein
Luftblasen falsch hohe oder falsch tiefe Resultate
• Ohne Kühlung, Messung <15min bis zur Analyse
• Mit Kühlung (0-4 °C) <30 min bis zur Analyse
Arterialisiertes Kapillarblut:
• Entnahme vom Ohrläppchen oder der Fingerbeere mittels heparinisierter Glaskapillare
• Unmittelbare Analyse notwendig
• Blasenfreie Entnahme (end-to-end)
Wissen wie Blutgas-Ergebnisse Interpretiert werden (Normogramm)
• 1. pH-Wert
Referenzbereich 7.35-7.45: keine Störung oder Störung kompensiert
< 7.35: Azidose, >7.45: Alkalose
2. [HCO3] std. / base excess
Referenzbereich [HCO3] std. Erwachsener: männlich: 22.2-28.3 mmol/l, weiblich 21.2-27.0 mmol/l
↓ primär metab. Azidose oder komp. resp. Alkalose
↑ primär metab. Alkalose oder komp. resp. Azidose
3. pCO2
Referenzbereich Erwachsener: männlich: 4.66-6.38 kPa, weiblich 4.26-5.99 kPa
↓ primär resp. Alkalose oder komp. metab. Azidose
↑ primär resp. Azidose oder komp. metab. Alkalose
4. pO2
Referenzbereich 2-Tage bis 60 Jahre: 11.0-14.4 kPa
↓ Hinweis auf Sauerstoffmangel
↑ Hinweis auf maschinelle Beatmung
5. Serum-Anionenlücke
zur Beurteilung metabolischer Azidosen
= Na+- (Cl- + HCO3) (Normalwert: 8-16 mmol/l)
Die Bedeutung von Wasser, Osmolalität und Elektrolyte für das Leben
Ohne Wasser und Elektrolyte kein Leben
Mensch besteht zu 60% aus Wasser
Osmotischer Druck um Druck auszugleichen
Menschliche Regulationsmechanismen für Wasser-Elektrolyt-Osmolalität-Haushalts
Bei Wasserverlust muss wieder mehr Wasser aufgenommen werden
Einziges durch Steuerungsmechanismen reguliertes Kompartiment ist der Extrazellulärraum.
Osmoregulation erfolgt durch Ausscheiden/Retention von freiem Wasser.
Volumenregulation des Extrazellulärraums erfolgt durch Ausscheiden/Retention von Natrium.
Wichtigste Ionen und deren Bedeutung für den menschlichen Organismus
Technische und biologische Einflüsse bei Elektrolyt-Bestimmungen
Die Bedeutung von Calcium und Phosphat für den menschlichen Organismus
Aufbau des Knochens: Anorganische Bestandteile (ca. 45%) Calcium und Phosphat
Speicherfunktion (Calcium, Phosphat)
Phosphat ist zusammen zusammen mit Calcium zentrales Element der Knochenmatrix: Calcium Hydoxy Apatit. Ausserhalb des Knochens ist Phosphat wichtiger Energieträger (ATP: liefert Energie für diverse Stoffwechselvorgänge), pH Puffer.
Menschliche Regulation des Calcium-Haushalts
Wichtigste Parameter in der klinischen Chemie zur Beurteilung des Knochenstoffwechsels
Parameter:
• Calcium
• Phosphat
• Vitamin D
• Parathormon (PTH)
• Calcitonin
• P1NP (Prokollagen-1 N-terminales Propeptid)
• ß-CrossLaps (ß-CTx)
• Knochen-spezifische alkalische Phosphatase (Ostase)
Wichtigste Krankheiten im Zusammenhang mit dem Knochenstoffwechsel
Osteoporose ist eine Knochenerkrankung, die durch einen Verlust an Knochenmasse und eine Verschlechterung der Knochenqualität gekennzeichnet ist
labormedizinischer Prozess
Präanalytik - alle Vorgänge vor eigentlicher Analyse
Analytik
Postanalytik
Fehlerquellen der Präanalytik
- Indikationsstellung und Laboranforderung (Verlaufskontrolle in zu kurzen Abstände)
- Patientenidentifikation (Verwechslung, kein Ettikett)
- Blutentnahme (Falsches Röhrchen, Entnahme bei Infusion, zuwenig, lange Stauung, Faust, Hämolyse)
- Transport und Lagerung (Temperatur, lichtgeschützt, zu lange)
- Zentrifugation
häufigstes präanalytisches Problem
Hämolyse
Probenarten der klinischen Chemie
- Blut (Arteriell, Venös, Kapillar) (Serum, Plasma) -> unterschiedliche Zusätze
- Urin (Spontanurin, 1./2. Morgenurin, Sammelurin) -> unterschiedliche Zusätze
- Liquor
- Speichel
- Stuhl
- Punktat
Serum
Flüssiger Teil NACH Blutgerinnung (ohne Fibrinogen etc)
(30min bis vollständiger Gerinnung)
Plasma
- Flüssigkeit mit Fibrinogen und allen Gerinnungsfaktoren
- Blutflüssigkeit nach Zentrifugation
- Blutgerinnung wurde chemisch verhindert
Zusätze für Blutproben und deren Bedeutung
- EDTA (für Blutbild,Blutasusstrich, DNA/RNA Analytik)
- Natrium-Citrat (Gerinnungsanalytik, Blutsenkung)
- Heparin (Notfall)
- Fluorid (hemmt Glykolyse -> Glukosemessung)
- Gerinnungsakzelerator (beschleunigt Gerinnung)
- ohne Zusätze (Liquordiagnostik, klinische Chemie)
Blutentnahme Richtlinien
Nüchtern (daher optimal am Morgen)
Liegend/Sitzend (15min ruhen)
Eingeschränkte körperliche Aktivität
Nicht am Infusionsarm, aus Katheter, Narben, Ödeme
Füllmenge Blut
- Röhrchen ganz füllen
- Alkoholbestimmung (Verdunstung)
- Bicarbonat (Äquilibrierung mit CO2)
- Röhrchen bis Füllmarkierung füllen
- Gerinnungsuntersuchungen und Blutsenkungsreaktionen
- korrektes Mischverhältnis mit Antikoagulanten ist erforderlich
- Erforderliches Volumen
- KLinische Chemie Routinentest: ca. 5 mL (2.5 mL Serum/Plama)
- Spezialanalysen wie Hormone, Tumormarker: 1-2 mL Blut pro Bestimmung
Reihenfolge der Entnahmeröhrchen und Farbcode
Vorgehen bei der venösen Blutentnahme
- Hände desinfizieren
- Stauung (handbreite oberhalb Punktionsstelle), max. 60sek, kein Pumpen!
- Punktionsstelle desinfizieren (trocknen lassen!!)
- Handschuhe benutzen
- Vene mit Schliff nach oben punktieren
- Stauung lösen bei beginnendem Blutfluss, Röhrchen füllen (Rheinefolge!!)
- Kanüle entfernen, Punktionsstelle abdrücken
- Probe mind. 3 mal invertieren
Kapilarblutentnahme - Zweck und Vorgehen
Ort: Finger, Ferse, Ohr
Zweck: Blutzucker-, Blutgasanalyse, bei Kleinkindern
Technik:
Punktion mit Einmallanzette/Punktionshilfe
erster Tropfen abwischen
Blut mit Kapillare abnehmen
Uringewinnung
- Spontanurin (ungeeignet für mikrobielle Untersuchung)
- 1. Morgenurin (Teststreifen, Sediment, klinisch-chemische und bakterielle Untersuchung)
- 2.Morgenurin (ersetz Sammelurin, Proteindiagnostik, Teststreifen)
- Sammelurin (24h Probe) (Zusätze: Salzsäure, Konservierungsmittel) (Klinisch-chemische Untersuchungen, keine bakterielle Untersuchung und Sediment)
- Reinigen des Urogenitaltraktes
- Gewinnung des Mittelstrahlurins
- Keine Uringewinnung während oder kurz nach der Menstruation
Aufbewahrung
- Urinsediment innerhalb von 2h nach Urinsammlung
- Aufbewahrung bei 4°C
- Calcium, Magnesium, Oxalat und Phosphat -> Urin ansäuren (pH 2)
- Harnsäure -> Urin alkalisieren (pH > 8)
Sammelurin - Zusätze für entsprechende Analysen
- nur mit HCl Zusatz
- Ammonium
- Calcium
- HIES
- Katecholamine
- Magnesium
- Metanephrine
- Oxalat
- Phosphat + Clearance
- VMS und HVS
- Analysen, welche auch mit angesäuretem Urin durchgeführt werden können
- Citrat
- Cortisol
- Glukose
- Harnstoff
- Kalium
- Kreatinin + Clearance
- Natrium
- ohne Zusatz
- Albumin
- Chlorid
- Delta-Aminolävulinsäure
- Harnsäure
- Osmolalität
- Pankreas-Amylase
- pH
- Porphobilinogen
- Protein total
- Spurenelemente und Blei (Spezialgefäss)
- Thiocyanat
Liquor Gewinnung
Punktion im Sitzen/Seitenlage mit angewinkelten Beinen
Punktion im Zwischenwirbelraum LWK 3/4 oder 4/5
mehrere Einzelproben von 2-10ml (max. 10ml)
Transport von Proben
Stehend bei 18-22°C, vor Sonnenlicht schützen
Vollblut nicht im Kühlschrank/Gefrierer
Transport innert 30min (max. 2-4h bei Blutkulturen)
Bei verzögertem Transport:
-Abbau Metaboliten Glukose sinkt, Laktat steigt, Ammoniak steigt
-Freisetzung von Kalium, AST, LDH, Mg
-Hämolyse oft nicht sichtbar
Zentrifugation
-1300-3000g bei 5-15min (Gel-Röhrchen NIE nachzetrifugieren)
- wenn zu kurz/ zu wenig: keine vollständige Trennung (Thrombozyten)
- wenn zu lange/ zu fest: Hämolyse (Zellen platzen)
Einflussgrössen
in vivo (vom Patient selber)
methodenunabhängig
kurz oder langfristig
nicht beeinflussbar
Störfaktoren
in vitro (bei Probe)
verfälschen Messergebnisse
methodenabhängig
beeinflussbar
-
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-
Lernkarten
labormedizinischer Prozess
Präanalytik - alle Vorgänge vor eigentlicher Analyse
Analytik
Postanalytik
Fehlerquellen der Präanalytik
- Indikationsstellung und Laboranforderung (Verlaufskontrolle in zu kurzen Abstände)
- Patientenidentifikation (Verwechslung, kein Ettikett)
- Blutentnahme (Falsches Röhrchen, Entnahme bei Infusion, zuwenig, lange Stauung, Faust, Hämolyse)
- Transport und Lagerung (Temperatur, lichtgeschützt, zu lange)
- Zentrifugation
häufigstes präanalytisches Problem
Hämolyse
Probenarten der klinischen Chemie
- Blut (Arteriell, Venös, Kapillar) (Serum, Plasma) -> unterschiedliche Zusätze
- Urin (Spontanurin, 1./2. Morgenurin, Sammelurin) -> unterschiedliche Zusätze
- Liquor
- Speichel
- Stuhl
- Punktat
Serum
Flüssiger Teil NACH Blutgerinnung (ohne Fibrinogen etc)
(30min bis vollständiger Gerinnung)
Plasma
- Flüssigkeit mit Fibrinogen und allen Gerinnungsfaktoren
- Blutflüssigkeit nach Zentrifugation
- Blutgerinnung wurde chemisch verhindert
Zusätze für Blutproben und deren Bedeutung
- EDTA (für Blutbild,Blutasusstrich, DNA/RNA Analytik)
- Natrium-Citrat (Gerinnungsanalytik, Blutsenkung)
- Heparin (Notfall)
- Fluorid (hemmt Glykolyse -> Glukosemessung)
- Gerinnungsakzelerator (beschleunigt Gerinnung)
- ohne Zusätze (Liquordiagnostik, klinische Chemie)
Blutentnahme Richtlinien
Nüchtern (daher optimal am Morgen)
Liegend/Sitzend (15min ruhen)
Eingeschränkte körperliche Aktivität
Nicht am Infusionsarm, aus Katheter, Narben, Ödeme
Füllmenge Blut
- Röhrchen ganz füllen
- Alkoholbestimmung (Verdunstung)
- Bicarbonat (Äquilibrierung mit CO2)
- Röhrchen bis Füllmarkierung füllen
- Gerinnungsuntersuchungen und Blutsenkungsreaktionen
- korrektes Mischverhältnis mit Antikoagulanten ist erforderlich
- Erforderliches Volumen
- KLinische Chemie Routinentest: ca. 5 mL (2.5 mL Serum/Plama)
- Spezialanalysen wie Hormone, Tumormarker: 1-2 mL Blut pro Bestimmung
Reihenfolge der Entnahmeröhrchen und Farbcode
Vorgehen bei der venösen Blutentnahme
- Hände desinfizieren
- Stauung (handbreite oberhalb Punktionsstelle), max. 60sek, kein Pumpen!
- Punktionsstelle desinfizieren (trocknen lassen!!)
- Handschuhe benutzen
- Vene mit Schliff nach oben punktieren
- Stauung lösen bei beginnendem Blutfluss, Röhrchen füllen (Rheinefolge!!)
- Kanüle entfernen, Punktionsstelle abdrücken
- Probe mind. 3 mal invertieren
Kapilarblutentnahme - Zweck und Vorgehen
Ort: Finger, Ferse, Ohr
Zweck: Blutzucker-, Blutgasanalyse, bei Kleinkindern
Technik:
Punktion mit Einmallanzette/Punktionshilfe
erster Tropfen abwischen
Blut mit Kapillare abnehmen
Uringewinnung
- Spontanurin (ungeeignet für mikrobielle Untersuchung)
- 1. Morgenurin (Teststreifen, Sediment, klinisch-chemische und bakterielle Untersuchung)
- 2.Morgenurin (ersetz Sammelurin, Proteindiagnostik, Teststreifen)
- Sammelurin (24h Probe) (Zusätze: Salzsäure, Konservierungsmittel) (Klinisch-chemische Untersuchungen, keine bakterielle Untersuchung und Sediment)
- Reinigen des Urogenitaltraktes
- Gewinnung des Mittelstrahlurins
- Keine Uringewinnung während oder kurz nach der Menstruation
Aufbewahrung
- Urinsediment innerhalb von 2h nach Urinsammlung
- Aufbewahrung bei 4°C
- Calcium, Magnesium, Oxalat und Phosphat -> Urin ansäuren (pH 2)
- Harnsäure -> Urin alkalisieren (pH > 8)
Sammelurin - Zusätze für entsprechende Analysen
- nur mit HCl Zusatz
- Ammonium
- Calcium
- HIES
- Katecholamine
- Magnesium
- Metanephrine
- Oxalat
- Phosphat + Clearance
- VMS und HVS
- Analysen, welche auch mit angesäuretem Urin durchgeführt werden können
- Citrat
- Cortisol
- Glukose
- Harnstoff
- Kalium
- Kreatinin + Clearance
- Natrium
- ohne Zusatz
- Albumin
- Chlorid
- Delta-Aminolävulinsäure
- Harnsäure
- Osmolalität
- Pankreas-Amylase
- pH
- Porphobilinogen
- Protein total
- Spurenelemente und Blei (Spezialgefäss)
- Thiocyanat
Liquor Gewinnung
Punktion im Sitzen/Seitenlage mit angewinkelten Beinen
Punktion im Zwischenwirbelraum LWK 3/4 oder 4/5
mehrere Einzelproben von 2-10ml (max. 10ml)
Transport von Proben
Stehend bei 18-22°C, vor Sonnenlicht schützen
Vollblut nicht im Kühlschrank/Gefrierer
Transport innert 30min (max. 2-4h bei Blutkulturen)
Bei verzögertem Transport:
-Abbau Metaboliten Glukose sinkt, Laktat steigt, Ammoniak steigt
-Freisetzung von Kalium, AST, LDH, Mg
-Hämolyse oft nicht sichtbar
Zentrifugation
-1300-3000g bei 5-15min (Gel-Röhrchen NIE nachzetrifugieren)
- wenn zu kurz/ zu wenig: keine vollständige Trennung (Thrombozyten)
- wenn zu lange/ zu fest: Hämolyse (Zellen platzen)
Einflussgrössen
in vivo (vom Patient selber)
methodenunabhängig
kurz oder langfristig
nicht beeinflussbar
Störfaktoren
in vitro (bei Probe)
verfälschen Messergebnisse
methodenabhängig
beeinflussbar
Unbeeinflussbare Einflussgrössen
Alter
Geschlecht
Ethnizität
Erbfaktoren
Langzeit Biorythmen
Beeinflussbare Einflussgrössen
Alkohol, Rauchen, Medikamente
Körperliche Aktivität
Stress
Nahrung
Körperlage
Zirkadiane Zyklen
Prä/postprandial (Glukose, Harnstoff)
in vitro Störgrössen
Probenmaterial (falsches Material/Rheienfolge)
Probenalter
Probenbeschaffenheit (Hämolyse, Lipämie --> endogen)
Medikamente (exogen) /Op
Lipämie
-Patient nicht nüchtern oder krankhaft (Fettstoffwechselstörung, Hyperlipoproteinämie)
-Kontamination mit Infusion (Lipidemulsion)
Trübung
Ikterie
-abnorme erhöhung von Billirubin (Hämoglobin Abbau)
-krankheitsbedingt (Hepatitis, Leberversagen, Gilbert Syndrom, Crigler-Najjar)
Optisch und Chemische Verfälschung
Hämolyse
Auflösung der Erythrozytenzellmembran -> LDH, K, AST wird erhöht
in vivo: Thalassämie, Sichelzellanämie, AIHA, G6PD Mangel, Drogen, Toxin, Transufsionen
in vitro: Blutentnahme aus Katheter, Stauung, Desinfektionsmittel, Vakuum, kleine Kanüle, Mischen, Lagerung, Zentrifugation
Optisch und Chemische Verfälschungen (rötlich verfärbtes Plasma)
einfache Trennverfahren
-Zentrifugation Trennung nach Grösse/Dichte (Radius ist liner zu g-Kraft)
-Flüssig-Flüssig-Extraktion Phasentrennung Wasser: Chloroform:methanol
-Festphasenextraktion Säule, Methanol, Eluent - mit Vakum absauegn (Miniprep)
Elektrophorese
- Wanderung von geladenen Molekülen in einem ekeltrischen Feld
- proportional mit der Feldstärke und Molekülladung -> +
- proportional mit der Molekülgrösse und Viskosität der Lösung -> -
Serum Elektrophorese Auftrennung der Moleküle nach elektr. Ladung
Proteine (Bsp.: Albumin)
Isoelektrische Fokussierung ph-Gradient als isoelektrischer Punkt
SDS-Page Proteinstrukturveränderung durch SDS, Auftrennung disulfidbrücken der Proteine mittels 2-Mercaptoethanol und Hitze (95°C)
Fotometrie
Absorptionsmessung
Lambert-Beer-Gesetz Transmission = Intensitiät I / Intensität I0
A=ac*c*d
Absorption=Proportionalitätsfaktor*Konzentration*Schichtdicke
nur c ändert sich
Aufbau Fotometer
Weisses Licht -> Sample scannen -> Eission
Antikörper Gewinnung
1. Mouse hybridoma
2. Phage display
3. Transgenic mouse
4. single B Cell
Monoklonale AK gewinnung
1. Maus immunisieren
2. Milz entnehmen
3. fusionieren mit Myeloma Cells ->Hybridomas
4. Monoklonale Antikörper isolieren
Poly- vs. Monoklonale Antikörper
Monoklonal: Sie richten sich gegen ein bestimmtes, einzelnes Epitop
Polyklonal: Sie richten sich gegen mehrere Epitope
Heidelberger Kurve
Direkt und indirekte immunchemische Verfahren
direkter ELISA Antigen - AK mit Konjugat
indirekter ELISA Antigen - 1. AK - 2. AK mit Konjugat
Sandwich ELISA Capture antibody - Antigen - 1. AK - 2. AK mit Konjugat
nachweisen mit Fluoreszenz
(enzymed-linked immunosorbent assay)
Homogene und heterogene immunchemische Verfahren
Heterogen: Direct ELISA, Indirect ELISA, Sandwich ELISA, Competive ELISA (versch. Epitop)
Homogen: gleiches Epitop
ECLI
ElectroChemieLuminescence-Immunoassay
Prinzip von chromatographischen Trennverfahren
Adsoprtions-Chromatographie Adsorption an Oberfläche der stationären Phase
- Dünnschichtchromatographie
- Säulenchromatographie
- HPLC (< 400 bar)
- UPLC 600 - 1200 bar
Verteilungs-Chromatographie Löslichkeit in 2. Flüssigphase (nicht mischbar)
Affinitäts-Chromatographie (AK-Antigen bindung, Enzym-Substrat,...)
Ionentausch-Chromatographie ionische Bindung an Molekülreste
Grössenausschluss-Chromatographie Eindringen in Poren
Grundlagen der Massenspektrometrie
technisches Verfahren zur Analyse der Masse von Molekülen und Atomen
Vorgehen:
Trenntechnik -> Erzeugen von Ionen -> Trennen der Ionen -> Detektion der Ionen -> Datenauswertung
Typische Ionisierung über ESI; bevorzugt für Biomoleküle, da schonend und kaum zu Fragmentation führt
Typische Massenfilter; Quadrupole als QqQ (Triple-Quadrupol-MS) -> erlauben Tandem-Massenspektroskopie
Bei einfachen Matrizen (Reinstoffen) kan MS direkt angewendet werden, ansonsten muss die Probe zuerst aufgetrennt werden
-> LC-MS
Prinzip, Funktion und Anwendung von LC-MS
Liquid Mass spectrometry -> Komplexe Matrix
Vollblut/Serum/Plasma -> Probenvorbereitung -> LC-MS System
Prinzip, Funktion und Anwendung von GC-MS
Gaschromatographie-> für flüchtige Analyten
Analyt muss sich unzerstört verdampfen lassen (Inertgas He, H, N)
