Molekularbio
Part 4 - Fragenkatalog Synthetische Biologie und weitere Fragen
Part 4 - Fragenkatalog Synthetische Biologie und weitere Fragen
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Flashcards
Was kann man alles synthetisieren und was will man jeweils erfahren?
Synthese von kodierenden Regionen
- o Welche Regionen sind für die Eigenschaften wichtig?
- o Proteine mit veränderten Eigenschaften
• Synthese von Expressionssignalen
- o Welche Regionen sind für Eigenschaften wichtig?
- o neue Expressionseigenschaften
• Synthese von Genen
- o Reportergene
- o „neue“ Gene
• Synthese von Gen_Netzwerken und Reaktionswegen
• Synthese von funktionalen Genomen
Geben Sie drei Beispiele für die Benutzung eines bestimmten Enzyms für biotechnologische Anwendungen.
Amylase: Brauindustrie, biologisches Waschmittel für Stärkeabbau
Trypsin:Babynahrung: baut Proteine ab, erleichtert die Verdauung
Lipasen: biologisches Waschmittle zur Entfernung von Fettflecken
Wegen welcher Sequenzeigenschaften funktioniert ein bakterielles Gen unter Umständen in Eukaryoten nicht richtig?
Bakterielle Gesequenzen sind oft A/T-reicher, als Pflanzengensequenzen. =>Eventuell andere Nutzung synonymer Codons
Die tRNA Konzentration korreliert mit der Häufigkeit der zugehörigen Codons =>Codons mit niedriger tRNAIKonzentration werden unter Umständen langsamer decodiert => ineffiziente Translation => A/T-reiche Sequenzen in den Pflanzen können zur RNAIInstabilität führen.
Polyadenylierungssignale enthalten meist AATAA. RNAIInstabilitätsIDeterminanten sind oft AIreich (z.B. ATTTA)
Erhöhter A/TIGehalt kennzeichnet Pflanzen-Introns; zusammen mit zufällig vorhandenen Splice/Donor und Acceptor/Signalen (AG’GT) kann unerwünschtes Splicing resultieren.
Wie kann man Gene an den beabsichtigten Wirtsorganismus anpassen?
Da bakterielle Gene A/T-reich sind: Erhöhung des G/C-Gehaltes durch Anpassung der synonymen Codons (anderes Codon für gleiche Aminosäure)
Änderung der Codon-Zusammensetzung, um die Translation zu verbessern (unter Berücksichtigung verschiedener tRNA-Konzentrationen in der Zelle)
andere Promotoren, Enhancerduplikation, Introns (Gene mit Introns werden im Allgemeinen besser exprimiert)
Was ist Bt\Toxin und wozu wird es verwendet?
Bacillus-thuringensis-Toxin ist ein insektizides Protein des Bacillus thuringensis, welches sich im Insektendarm von der passiven in seine aktive Form umwandelt und die Darmwand schädigt.
Bt.Toxin wird also zur Schädlingsbekämpfung verwendet und zusätzlich auch zur Herstellung gentechnisch veränderter Nutzpflanzen. Diese Pflanzen haben das Bt-Gen im Genom integriert, wodurch nur Frassinsekten getötet werden.
Welche Vorteile hat die Chloroplastentransformation?
Bei der Chloroplastentransformation werden Transgene ins Chloroplastengenom integriert.
- hohe Expressionsrate, da pro Zelle sehr viele Plastidengenome existieren
- bakterielle Transene sind unmodifiziert verwendbar, da das Expressionssystem der Choroplasten eher prokaryotisch ist (keine Probleme mit zufälligen RNA-Instabilitäten)
überwiegend maternale Vererbung => Auskreuzungsgefahr geringer
-abgeschlossenes Kompartiment => keine toxischen Effekte im Zytoplasma
-genaue Integration
Was wissen Sie über den CaMV 35S Promoter?
CaMV = Cauliflower Mosaik Virus
Dies ist ein konstitutiver (=elementarer/wesentlicher) Promoter in der Pflanzengentechnik und funktioniert in vielen Pflanzen. Er ist verantwortlich für die Transkription des Genoms des Blumenkohl-Mosaik-Virus’.
Aufgrund der viralen Herkunft des Promoters ist die Transkription der nachgeschalteten Gene sehr effizient.
Welche Testmethoden für Anwesenheit eines Gens kennen Sie? Was sind Vor\ und Nachteile?
=> Testmethoden für die Anwesenheit eines Gens:
- Southern Blot :
- + weniger fehleranfällig
- - markierte Gensonde, Gelelektrophorese, Auskunft über die Länge der Fragments
- RT3PCR mit spezifischen Primern
- +rasches Screening, unspezifische PCR3 Amplifikation möglich, keine Auskunft über die Länge des Fragments nötig
- - fehleranfällig
- Restriktionsanalyse:
- +keine Hybridisierung nötig
- - Auskunft über die Länge des Fragments & den Integrationsort nötig, sowie Restriktionsenzyme, aufwendig
- Sequenzierung
- - Auskunft über den Integrationsort,
- - aufwendig
Welche Testmethoden fürExpression eines Gens kennen Sie? Was sind Vor\ und Nachteile?
=>Testmethoden für die Expression eines Gens:
- Northern Blot
- +gibt Auskunft über Menge & Länge der RNA, Vergleich von RNA verschiedener Zellzuständen möglich
- - aufwendig, ineffizient
- Western Blot
- - Antikörper nötig
- RT-PCR
- + Quantifizierung durch „real-time“-PCR möglich
- - Umschreiben von RNA in cDNA
- ELISA
- +Detektion des Proteins
- - zwei spezifische Antikörper nötig
- Gen-Chip
- +Bestimmung verschiedener RNA
- - Spezies gleichzeitig
- In-situ-Hybridisierung
- +gibt Informationen über den Expressionsort
- -aufwendig, bei schwacher Expression nicht interpretierbar
Was sind die Methoden für den Nachweis von Protein, RNA und DNA?
Protein: Western Blot
RNA: Northern Blot
DNA: Southern Blot
Alle möglichen Modifikationen und was sie modifizieren ?
posttranslationale Protein-Modifikationen:
- Acethylierung,
- Methylierung,
- Phosphorylierung
- Glykosylierung,
- Ubiquitinierung
- Prozessierung/ proteolytische Spaltung
- Disulfidbrücke
Histon Modifikaitonen:
- Acethylierung,
- Methylierung,
- Phosphorylierung
- Ribosylierung
RNA-Modifikation
- Polyadenylierung,
- Splicing,
- Capping
Die folgende RNA-Sequenz könnte durch Basenpaarung einen partiellen Doppelstrang ausbilden. Markieren Sie die entsprechenden Regionen.
GCUUACGGGCAUUUCCUUAGAAUGCCCGCUUUACCAGAUUC
????
Wie sequenziert man heute Nukleinsäuren?
A) Beschreiben Sie eine Methode.
B) ...und nennen Sie eventuelle Vor3 und Nachteile.
Microarray
Vorteil: innert kurzer Zeit kann man Genome sequenzieren.
Nachteil: kostenspielige Verfahren, Fehleranfälligkeit...
Viele wichtige Prozesse bei Pflanzen laufen in Chloroplasten ab. Welche Elemente müsste ein künstliches Genkonstrukt enthalten, damit ein davon kodiertes Protein in Chloroplasten zur Funktion kommen könnte? Im Prinzip gibt es zwei verschiedene Möglichkeiten, um dies zu erreichen. Beschreiben Sie die entsprechenden Genkonstrukte für die beiden Möglichkeiten
???
Wie versucht man die Allergenität eines Proteins abzuschätzen?
Versuch mit Probanden, oder Test mit Serum von Allergikern, oder Abschätzen aus Erfahrung (Strukturähnlichkeiten mit Allergenen...)