Methoden der DNA-Analyse

Klonierung, Plasmide, Restriktions-Endonukleasen, Protein-Extraktion

Klonierung, Plasmide, Restriktions-Endonukleasen, Protein-Extraktion


Theresa Weiss
Diese Lernkarten bieten einen umfassenden Überblick über Methoden der DNA-Analyse auf Universitätsniveau. Sie behandeln verschiedene Techniken zur Klonierung und Expression von Genen, einschließlich der Verwendung von Plasmiden, Vektoren wie Lambda-Phagen und BACs, sowie Methoden zur Analyse und Manipulation von DNA-Fragmenten. Die Karteikarten sind besonders nützlich für Studierende und Forscher, die sich mit molekularer Biologie und Genetik beschäftigen, da sie detaillierte Informationen über die Funktionsweise und Anwendung dieser Techniken liefern.
Flashcards
56
Students
3
Language
German
Category
Biology
Level
University
Created / Updated
26.06.2016 / 28.03.2018

Flashcards

Welche Schritte gehören zu einer Klonierung?

  • Gen-Isolierung
  • Vektor.Isolierung
  • Vektor-, Gen-Restriktion
  • Ligation vom Gen in den Vektor
  • Kompetent machend er Zellen
  • Transformation
  • Selektion & Screening
  • Verifizierung

Woher bekommt man das zu isolierende Gen?

  • Organismus
  • Plasmif
  • Generiung mittels PCR
  • Chemische Synthese
  • Kauf

Was muss man wissen um ein Gen aus einem Organismus zu isolieren?

  • Gen-Ort und die Umgebung
  • Restriktionsschnittstellen

von genomischer DNA

Was muss man wissen um ein Gen von einem Plasmid zu isolieren?

Die Plasmidkarte (Nukleinsäuresequenz)

Restriktionsschnittstellen

von Plasmid-DNA

Was muss man wissen um ein Gen mittels PCR zu Generieren?

  • Nukleinsäure-Sequenz von Gen & Umgebung
  • Primerbindungsstellen

Von genomischer & Plasmid-DNA möglich

Was muss man wissen um ein Gen mittels chemischer Syntehse zu generieren?

Die Nukleinsäureseuenz

Wozu kloniert man Gene?

  • Isolierung von Genen
  • Analyse der Gensequenz
  • Vervielfachung eines Gens
  • Expression eines Gens
  • Gendisruption
  • Mutationsanalyse
  • etc.

Welche Arten von Restriktions-Endonukleasen gibt es?

  • Typ I
    • schneidet weit von Erkennungsstelle entfernt
    • braucht ATP
       
  • Typ II
    • Schnittstelle liegt in der Erkennungsstelle (Palindrom)
    • verbraucht kein ATP
    • machen sticky oder blunt ends
  • Typ III
    • schneidet 24-26 bp stromabwärts der Erkennungssequenz
    • braucht ATP

Was sind Isoschizomere?

haben selbe Erkennungs-Sequenz und schneiden an der selben Sequenz.

erstes gefundenes ist der Prototyp, nachfolgende sind die Isoschizomere.

meist aus verschiedenen Bakterienstämmen isoliert ---> können unterschiedliche Reaktionsbedingungen brauchen

Was sind Neoschizomere?

Erkennen die selbe Sequenz aber schneiden unterschiedlich

Was sind Isocaudamere?

Erkennt eine etwas andere Sequenz aber erzeugt die selben Enden

Entstandene Enden können zusammen ligiert werden, aber möglicherweise nicht mehr durch diese Enzyme geschnitten werden.

Welche Arten von natürlich-vorkommenden Plasmiden gibt es?

  • Virulenz-Plasmide
  • Konjugatiosnplasmide
    Übertragung genetischen Materials über Sex-pilus
  • Drug-Restistence-Plasmide
    Antibiotika-Resistenzen

Welche Arten von Vektoren gibt es?

  • Klonierungsvektoren
  • Shuttle-Vektoren
  • Expressionsvektoren

können prokaryotisch, eukaryotisch oder viral sein

Was sind Phagemide?

Vektoren die teils Sequenzen von Bakterien und Bakteriophagen beinhalten

Was ist ein Klonierungsvektor?

ein Plasmid, das modifiziert wurde um neue Gene aufzunehmen. Dient zum "Transport" von Sequenzen zwischen biologischen hosts und dem teströhrchen.

Welche essentiellen Bestandteile benötigt ein Klonierungsvektor?

  • ori
  • selektionsmarker
  • MCS (Ort wo Fremd-DAN inseriert wird, ohne Replikation oder Selektion zu stören)

Welche Eigenschaften braucht ein Klonierungsvektor?

  • geringe Größe
    • leicht zu manipulieren
    • leicht zu isolieren
  • leicht auf Zellen übertragbar
  • Methoden für Selektion

Was sind Rekombinante Plasmide?

= Chimären-Plasmid

mit eingebrachter Fremd-DNA in der MCS

Welche Eigenschaften charakterisieren den ORI?

Wirts-Bereich

  • Spezies-Spezifisch
  • broad-hoast (replizieren in vielen Bakterien)
  • shuttle-vector: verschiedene ori's auf demselben Vektor, für die Replikation in verschiedenen Spezies

Replikationsrichtung

  • unidirektional
  • bidirektional

Replikationsursprung

  • low-copy: gleich wie genomische DNA
  • high-copy
  • eig sollte eine hohe kopienzahl sein, aber zu hohe Zahl kann toxisch für Wirt sein

Inkompatibilität: verschiedene Arten von Plasmide mit gleichem ori können nicht in der gleichen Zelle überleben

Wie funktioniert die Selektion mittels Antibiotika-Resistenzen?

Resistenz lässt es zu, dass Zelle auf Antibiotika-haltigem Medium wächst.

Resistenz befindet sich auf dem Plasmid --> nur Zellen die Plasmid haben, überleben

= Transformations-Effizienz

Arten von Resistenzen

  • Modifikation am Ribosom
  • Blockieren von Membrantransport-Systemen
  • Inaktivierung des Antibiotikums

Was ist pUC18/19?

künstlich hergestellte bakterielle Plasmide, Derivat des pBR322

  • 2686bp (klein)
  • high-copy Plasmide
  • lac-Operon zur Kontrolle der Transkription
  • Ampicillin-Resistenz

Unterschied: inverse Orientierung der MCS, Name pUC (plasmid, University of California)

Was ist direktionelles Klonieren?

gewährleistet, dass das Insert eine bestimmte Orientierung hat

Insert & Vektor werden mit 2 RE geschnitten, Vektor und Insert haben jeweils 2 unterschiedliche Enden

Wozu werden linker bei der Klonierung verwendet?

Um Restriktionsschnittstellen an die Enden des inserts zu bekommen. Schnittstelle darf im Insert nicht vorkommen.

welche Eigenschaften hat ein idealer Puffer?

  • pKA zwischen 6-8
  • chemisch inert
  • polar
  • nicht toxisch
  • salz- und temperatur-relevant
  • preiswert

Welche Reaktionspuffer gibt es?

  • TRIS
  • HEPES
  • BES
  • MOPS
  • MES

Welche Bestendteile enthält der Reaktionspuffer?

  • Salz
    stabilisiert Protein-Struktur, erleichter Protein-DNA Wechselwirkung
  • Zweiwertige Metallionen
    für Enzymaktivität
  • Glycerin
    stabilisiert Proteinstruktur bei Lagerung
  • EDTA
    Chelat, entfernt zweiwrtige Kationen, vor allem bei der Lagerung, als schutz vor Metall-Ionen abhämgiger Protease
  • Beta-Mercaptoethanol, Dithitreithol
    Reduktionsmittel, verhindert unerwünschte Disulfid-Bindungen
  • nicht-spezifische Proteine (BSA)
  • Ander Co-Faktoren: (ATP, NADH)

Welche DNA-Polymerasen werden verwendet?

E.coli DNA Polymerase I

  • mäßig prozessiv
  • 3'-5'-proof reading
  • 5'-3' strang verdrängende Exonuklease
  • zur Markeirung von DNA mittels nick-translation

Klenow-Fragment

  • c-terminale 70% der E.coli DNA Polymerase I
  • fehl 5'-3' Exonuklease Aktivität
  • Markierung von DNA durch auffüllen von kohäsiven Enden
  • Erzeugung stumpfer Enden (durch 5'-3' Polymerase, oder 3'5' Exonuklease)
  • früher proteolytisch erzeugt, heute kloniert

Was ist die Reverse Transkriptase?

RNA-abhängige DNA-Polymerase, wird verwendet um cDNA Kopien von RNA zu machen.

  • Quantifizierung von RNA
  • Klonierung von intron-losen Gene

welche reversen Transkriptasen werden verwendet?

  • M-MLV - Moloney murien leukemia virus
  • AMV avian myeloblastosis virus

Was machen DNA Ligasen?

schließen EInzelstrangbrüche.

  • Okazaki-Fragmente
  • DNAa-Reparatur

zwei Klassen

  • Klasse I: NAD+ als Cofaktor (Bakterien)
  • Klasse II: ATP ---"---- (Eukaryoten, Viren, Bakteriophagen)

alle teilen gemeinsame Sequenzen und Stuktur-Motive.

Wie erfolgt die Ligase-Reaktion?

in 3 Schritten

  • Bildung eines kovalenten Enzym-AMP Zwischenprodukts mit Lysin-Kette des Enzyms
  • Übertragung des AMP-Nukleosids an 5' Phosphat des DNA Strangs
  • Angriff auf AMP-DNA Bindung durch 3'OH des Einzelstrangs

Welche ist die am häufigsten verwendete DNA-Ligase?

T4-DNA-Ligase

einzelne Polypetid-Kette (68 kDa Molmasse)

pH: maximal bei 7.5-8, 40% Aktivität bei 6.9 & 65% bei 8.3

Ionen: Mg2+ erforderlich

DTT oder Mercaptoethanol erforderlich

Tenperatur: 16° Ideal (oder 4° über Nacht, 30min - ein paar Stunden bei RT)

Wovon hängt die Ligations-Effizienz ab?

von den DNA-Enden

sticky-ends

  • effizient weil basen annealing 5' und 3' Ende nah zueinander bringt,

blunt-ends

  • ineffizient
  • hohe Konzentration von DNA und Enzym erforderlich
  • Puffer viskos (z.B. durch PED)

Was macht die T4-Polynukleoitid-Kinase?

transferiert ein gamma-Pjosphat von ATP aus das 5' ENde von Polynucleotide

--> wenn 5'-Phosphat für Ligation fehlt

oder für radioaktive Markierung

Was macht die alkalische Phosphatase?

katalysiert die Entfernung von 5' oder 3' Phosphaten aus Nukleotiden --> OH-Enden entstehen

Zur Behandlung von DNA-Fragmenten die mit RE behandelt wurden vor der Ligation --> keine Reaktion ohne Insert!

Welche Vektoren werden für die Vermehrung in E.coli verwendet?

  • Plasmide
  • Bakteriophagen
    • Lambda
    • M13
  • spezialisierte Vektoren
    • Expressionsvektoren mit tags
    • Cosmid, BACS (für große Stücke

Was sind Bakteriophagen?

Viren, die Bakterien infizieren

Nukleinsäure-Moleküle enthält Gene für Phagen-Replikation + schützende, umgebende Proteinhülle = Capsid

Infektion = injizieren der DNA in die Wirtszelle, Phage bliebt draußen

DNA repliziert, Proteine exprimiert, Phage zusammen gebaut & freigegeben

Was ist der Bakteriophage Lambda?

Kopf- Schwanz-Phage

großes lineares Genom

"Stuffer" = Zentralregion des Genoms, kann manipuliert werden

zwei Lebens-Zyklen

  • Lytic: replikativ = Phagen werden hergestellt und Zelle lysiert
  • lysogen: latent = DNA ins GEnom einegebaut --> an Tochterzellen weitergegeben

Wie können Lambda-Phagen für Klonierung verwendet werden?

  • Insertionsvektor
    • darf Genomgröße max. um 5% erhöhen
  • Ersatz-Vektor
    • Ersatz des Stuffers mit target DNA (8-24kb, eukaryotische Gene)

Was ist M13?

filamentöser Phage

einzelsträngiges, zirkuläres Genom (6,4kb)

kann Fragmente bis zur 6x Größe des eigenen Genoms aufnehmen, aber je größer desto instabiler

Study